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Der monoklonale Anti-dsRNA-IgG2a-Antikörper J2 hat sich zum Goldstandard beim Nachweis von dsRNA entwickelt. Er wurde ursprünglich zur Erforschung von Pflanzenviren eingesetzt, doch seit der bahnbrechenden Veröffentlichung von Weber et al. im Jahr 2006, in der mit J2 nachgewiesen wurde, dass alle getesteten Positivstrang-RNA-Viren in infizierten Zellen reichlich dsRNA produzierten, wird dieser Antikörper in einer Vielzahl von Systemen intensiv eingesetzt, wie in über 200 wissenschaftlichen Publikationen dokumentiert ist.

J2 kann zum Nachweis von dsRNA-Zwischenprodukten bei so unterschiedlichen Viren wie dem Hepatitis-C-Virus, dem Dengue-Virus, dem Rhinovirus, dem Chikungunya-Virus, dem Tollwutvirus, dem Poliovirus, dem klassischen Schweinepestvirus, dem Brome-Mosaikvirus und vielen weiteren in Zellkulturen sowie in fixierten, in Paraffin eingebetteten histologischen Proben eingesetzt werden.

J2 wurde eingesetzt, um aufzuklären, wie antivirale Reaktionen ausgelöst werden, welche Gegenstrategien Viren entwickelt haben, um diese zu umgehen, und um den viralen Lebenszyklus zu erforschen, indem es ultrastrukturelle Lokalisierungsstudien an den Replikationsstellen viraler Nukleinsäuren ermöglicht (Welsch et al., 2009 & Knoops et al., 2011).

J2 wurde erfolgreich in der Elektronenmikroskopie, in der Immunfluoreszenzmikroskopie, in der Immunhistochemie sowie bei verschiedenen Immunfangverfahren wie Dot-Blots und ELISA eingesetzt. J2 wurde zudem als diagnostisches Werkzeug empfohlen, um festzustellen, ob ein unbekannter Erreger bakterieller oder viraler Natur ist (Richardson et al., 2010). In jüngster Zeit wurde J2 zudem zur Überwachung der Entfernung von dsRNA aus in vitro synthetisierten mRNA-Präparaten eingesetzt, was potenziell in der Gentherapie von Nutzen sein könnte (Kariko et al., 2011).

Der monoklonale Antikörper K1 IgG2a erkennt dsRNA mit einer ähnlichen Affinität wie unser weit verbreiteter J2-Antikörper und wird ebenfalls in lyophilisierter Form angeboten. Er kann zum histologischen und zytologischen Nachweis von dsRNA in Zellen und Geweben verwendet werden.

Er hat sich insbesondere als Alternative zu J2 bewährt, um Kreuzreaktionen zu vermeiden und/oder unerwünschte Hintergrundsignale zu beseitigen – und zwar in jenen seltenen Versuchsanordnungen, in denen J2 keine zufriedenstellenden Ergebnisse lieferte.

K1 kann zum Nachweis von dsRNA-Zwischenprodukten bei so unterschiedlichen Viren wie dem Hepatitis-Virus, dem Theiler-Maus-Enzephalomyelitis-Virus oder dem Japanischen Enzephalitis-Virus eingesetzt werden. Er wurde bereits zum Nachweis von dsRNA in kultivierten Zellen und in fixierten, in Paraffin eingebetteten histologischen Proben verwendet (siehe Publikationen).

Sollte Poly I:C nachgewiesen werden müssen, empfehlen wir dringend die Verwendung von K1 anstelle von J2, da K1 eine wesentlich höhere Affinität zu diesem synthetischen Polyribonukleotid aufweist (siehe Schönborn et al. 1991, Abb. 2).

K1 wurde erfolgreich in der Immunfluoreszenzmikroskopie, in der Durchflusszytometrie (FACS) und in Immuncapture-Verfahren (wie Dot-Blot und ELISA) eingesetzt.

Der monoklonale Anti-dsRNA-Antikörper K2 hat den Isotyp IgM.

K2 wird hauptsächlich für spezielle Anwendungen eingesetzt, bei denen J2 und K1 – Antikörper, die bei Raumtemperatur versendet werden können – nicht ausreichen. Aufgrund seines IgM-Isotyps neigt K2 bei hohen Konzentrationen stärker zur Aggregation und kann daher nicht lyophilisiert werden, sondern muss auf Eis versendet werden.

K2 wird vor allem in ELISA- und Sandwich-ELISA-Verfahren eingesetzt. Im Allgemeinen kann K2 in Anwendungen verwendet werden, bei denen ein Anti-dsRNA-Antikörper mit einem anderen Isotyp als IgG (IgG2a) erforderlich ist.